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Acción de la Insulina en hipertiroidismo: Enfocado sobre tejido muscular y adiposo .
Resumen elaborado por: Miguel Barrios, Diana De Flammineis y Daniela Claro
I. Introducción
Las hormonas tiroideas influyen en muchos procesos del cuerpo, no solo la insulina es la
responsable del metabolismo de glucosa y lípidos, sino que es acompañada también por T3. El
hipertiroidismo demanda mucha glucosa que es provista por distintos procesos.
II. Vaciamiento Gástrico y Absorción Intestinal
Tanto el vaciamiento gástrico como la absorción intestinal están catalogados por agravar
la hiperglucemia en estado postprandial, pero no es el principal medio del deterioro de la
tolerancia de glucosa en hipertiroidismo.
III. Producción de Glucosa
En hipertiroidismo, la producción de glucosa no responde a la insulina, debido a que las
hormonas tiroideas influyen en muchos procesos como elevar el nivel de: gluconeogenesis; de
glicolisis; formación de lactato; proteólisis muscular; concentración de GLUT2 en la membrana
plasmática del hígado, entre otros.
En la gluconeogenesis, la estimulación de Ácidos Grasos es atribuida a la producción de la
Coenzima Acetil-CoA, reducción de la nicotinamida adenina dinucleotido y producción d ATP.
IV. Importancia del Ciclo de Cori
El Ciclo de Cori puede tener el mayor significado fisiológico en el hipertiroidismo ya que,
con la conversión de glucosa en lactato en tejido muscular y adiposo y la conversión de glucosa en
el hígado, proporciona un ciclo de gran sustrato que puede ser utilizado por otros tejidos.
V. Utilización de Glucosa en Musculo Esquelético y Tejido Adiposo
Los efectos de la insulina en glucosa en musculo esqueléticos y tejido adiposo es variable
en hipertiroidismo.
A. Músculo Esquelético.
En este tejido, la insulina aumenta los rangos de glucosa dispuestos por distintos procesos.
La disposición de glucosa en hipertiroidismo ha sido examinada por 2 técnicas: el pinzamiento
hiperinsulinémico-euglucémico, donde la glucosa tomada aparece en el musculo mayormente y la
técnica arteriovenosa a través del musculo del antebrazo.
En personas sanas que se les suministro por 2 semanas T3 o en pacientes con
hipertiroidismo, en ambos casos los niveles de la glucosa basal y máxima en concentraciones de
insulina, los resultados arrojados fueron normales, lo que determina que la resistencia de insulina
en hipertiroidismo puede ser selectiva en el hígado y no incluye los tejidos periféricos.
En cuanto al flujo sanguíneo, este es elevado en musculo esquelético en hipertiroidismo,
esto examinado y comprobado por la técnica arteriovenosa a través del musculo del antebrazo en
situación postprandial, lo que determino también que los niveles de glucosa neta tomada fue
normal. A diferencia de la extracción fraccional de glucosa, que no depende del flujo sanguíneo,
fue encontrada disminuida. Con estos resultados se concluye que el musculo esquelético es
también resistente a la insulina y que el flujo sanguíneo mantiene los niveles normales o
incrementados de glucosa en estado hipertiroideo.
Luego de realizar un corto tratamiento de T3 en el musculo soleo de ratas, fue encontrado
que el transporte de glucosa fue incrementado en niveles máximo y basal de insulina; y en niveles
fisiológicos los resultados fueron normales, lo que se concluye que en hipertiroidismo aumenta el
proceso de transporte de glucosa a insulina. Esto es explicado por el incremento de la
concentración del transportador de glucosa GLUT1 y por la división fraccional del transportador de
Glucosa GLUT4 que se translocan en el fondo intracelular de la membrana plasmática como
respuesta a la insulina.
En personas con hipertiroidismo, la translocación de GLUT4 ha sido examinada en
monocitos periféricos, por lo que concentraciones basales de GLUT4 en ellos son elevados. Pero la
translocación estimulante de insulina de estos transportadores en la superficie celular, fueron
disminuidos.
En hipertiroidismo la glucosa tomada en presencia de insulina depende de GLTU3, ya que
este incrementa los valores basales y la demanda de energía en los tejidos. Este GLUT3 es el
principal responsable del aumento celular de transporte y utilización de glucosa.
También en musculo, el rango de Fosforilacion de glucosa en respuesta a insulina es
elevado en hipertiroidismo. Experimentos con ratas a las que se les suministra T3 sugieren que el
rango de estimulantes de insulina de Fosforilacion de glucosa incrementa la actividad de la
hexoquinasa, lo que puede ser causado por el efecto de la insulina sobre la enzima.
Con respecto a la síntesis de glucógeno en tejido muscular, para su estudio, se le
administro T3 a ratas durante diferentes intervalos de tiempo lo que indujo la sensibilidad de la
síntesis de glucógeno de insulina en el musculo soleo aislado, estos resultados coinciden con los
hallazgos encontrados en sujetos sanos de hipertiroidismo o en sujetos con hipertiroidismo a los
que se les suministro T3 por un tiempo determinado. Estos resultados fueron medidos por
calorimetría indirecta durante una de las técnicas mencionadas anteriormente luego de una
sobrecarga de glucosa oral. Estos estudios mostraron como la síntesis de glucógeno es reducida en
hipertiroidismo.
La captación de glucosa en tejido muscular en estado de hipertiroidismo es normal o
incluso aumentada debido a un aumento de las tasas de flujo sanguíneo. Teniendo en cuenta que
las tasas de síntesis de glucógeno estimulado por insulina están reducidas en el musculo, los
residuos de glucosa se redireccionan hacia la glicolisis, formación de lactato y oxidación de
glucosa
Además de esto, un aumento en la tasa de glucogenolisis también puede facilitar la
formación de lactato en el músculo en hipertiroidismo. Los mecanismos de este efecto fueron
examinados en músculos aislados de ratas tratadas con T3. Estos resultados sugieren que el
aumento en la formación de lactato y su posterior aumento en plasma se deben a una mayor
capacidad de respuesta de la glucogenolisis a la estimulación beta- adrenérgica en el músculo
esquelético causado por defectos post receptores.
En el músculo aislado de ratas con hipertiroidismo inducido, un aumento de insulina a
partir de la fisiológica a los niveles máximos no varió el contenido de glucosa 6P. Estos resultados
sugieren que, bajo estas condiciones, la insulina puede estimular la actividad de la
fosfofructoquinasa 6P, posiblemente a través de un aumento en la fructosa 2,6 bifosfato, señal
metabólica, por lo que las hormonas pueden controlar su concentración en el músculo.
Se ha demostrado que el hipertiroidismo aumenta la tasa de oxidación de glucosa insulino
estimulada en el musculo in vitro. Esto sugiere que existe un aumento preferencial en la formación
de lactato relacionada con la oxidación de glucosa en el músculo esquelético.
El hipertiroidismo se asocia con un incremento y el hipotiroidismo con un descenso en la
secreción GH y glucocorticoides in vivo, un cambio en los niveles de estas hormonas en plasma
afecta la homeostasis de glucosa; un exceso de GH o glucocorticoides induce a la intolerancia de
glucosa al interferir con la acción de la insulina en el hígado y tejidos periféricos. En el músculo
esquelético la Gh y los glucocorticoides inhiben la estimulación del metabolismo de glucosa
(síntesis de glucógeno y utilización de glucosa) en respuesta a la insulina. La administración de
pequeñas dosis de cortisona o GH en ratas con hipotiroidismo y las mediciones de la síntesis de
glucógeno y glicolisis en presencia de insulina sugieren que los cambios observados en la
sensibilidad de la utilización de glucosa sobre la insulina en músculo en estados alterados de la
tiroides es improbable que sea causado por cambios en las concentraciones plasmáticas de estas
hormonas y puede ser debido a cambios en los niveles de hormonas tiroideas
B. Tejido Adiposo
Los efectos de las hormonas tiroideas en la captación de glucosa en tejido adiposo ha sido
recientemente examinado in vivo en sujetos con hipertiroidismo después del consumo de
alimentos. Las tasas de flujo sanguíneo en tejido adiposo se incremento. En este estudio la
captación neta de glucosa (que depende del flujo de sangre) y la extracción fraccionada de glucosa
(que es independiente al flujo sanguíneo) fueron normales en tejido adiposo frente a
hiperinsulinemia, sugiriendo la resistencia a captación de glucosa para insulina. La supresión de
lipolisis por insulina después de la comida puede ser un mecanismo adicional facilitando la
absorción de glucosa por tejido adiposo insulino resistente.
VI. Metabolismo de Lípidos en Tejido Adiposo
El tejido adiposo es el tejido en donde existe una mayor actividad de la lipoproteína lipasa,
responsable de la eliminación de triglicéridos en plasma, particularmente en estado post prandial.
La lipasa sensible a hormonas es la principal lipasa catalizadora en la etapa limitante en la
estimulación de lipolisis en humanos, mientras que la lipasa adiposa triglicerida cataliza el paso
inicial en la hidrólisis de los triglicéridos almacenados en coordinación con la lipasa sensible a
hormonas.
Los efectos de la insulina sobre la lipolisis, la acción de la lipoproteína lipasa y los flujos de
ácidos grasos no esterificados en sujetos con hipertiroidismo fueron estudiados a través del tejido
adiposo abdominal en periodo post prandial. Los niveles post prandiales tardíos fueron
disminuidos. La disminución post prandial tardía de triglicéridos plasmáticos no fue secundario al
incremento de la frecuencia de eliminación por los dos principales tejidos que expresan la
lipoproteína lipasa, el tejido adiposo y el músculo debido a que la actividad de las lipoproteínas
lipasas post prandiales eran bajas o sin cambios en estos tejidos.
La mayoría de aparición de ácidos grasos no esterificados en el periodo post prandial
deriva de la lipolisis de triglicéridos almacenados. Resultados de estudios recientes sugieren que el
hipertiroidismo induce resistencia a la insulina de la lipolisis, que sin embargo es evidente a niveles
bajos de insulina (basal); esta tasa es rápidamente suprimida cuando la insulina se incrementa en
periodo post prandial.
Estudios recientes sugieren que las hormonas tiroideas regulan la lipolisis al afectar las
concentraciones locales de noreprinefrina y/o señalando el post receptor adrenérgico. A nivel
hepático se ha encontrado incrementada la lipogénesis en estado de ayuno en humanos con
hipertiroidismo (debido principalmente a un aumento en el envió de ácidos grasos no esterificados
al hígado). La estimulación paralela de síntesis y degradación de triglicéridos representa otro ciclo
metabólico realzado que pudiera contribuir al incremento de gasto de energía en sujetos con
hipertiroidismo. También se ha encontrado incrementada la síntesis de colesterol en el
hipertiroidismo probablemente debido a un incremento en la tasa de eliminación y/o un aumento
en la excreción biliar de colesterol.
Como resultado, en el hipertiroidismo la lipolisis de tejido adiposo se incrementa en
estado de ayuno resultando en un incremento en la producción de glicerol y ácidos grasos no
esterificados. Bajo estas condiciones el aumento de glicerol generado por lipolisis e incremento de
aminoácidos generados por proteólisis son usados como sustratos por la gluconeogenesis. Sin
embargo, la lipolisis es rápidamente suprimida a la normalidad después de la comida para facilitar
la eliminación de glucosa por el musculo insulino resistente. Esto asegura el uso preferencial de
glucosa cuando es disponible y ayuda a preservar las reservas de grasa.
Estudios demuestran que la liberación básica de glicerol del tejido adiposo fue elevada en
individuos con hipertiroidismo, pero ésta era suprimida cuando la insulina era introducida. A nivel
hepático, la lipogénesis se ha visto aumentada en estado de ayuno, en humanos con
hipertiroidismo simultáneamente con el aumento de la lipolisis y la tasa de oxidación de lípidos ; al
igual que la síntesis de colesterol también se ha visto aumentada; sin embargo los niveles de
colesterol plasmático se ven disminuidos.
VII. El Papel de las Citocinas
Específicamente se observó que el tejido adiposo
cumple una acción reguladora y
además, por liberar citocinas ejerce una función moduladora del metabolismo de glucosa y
lípidos, la inflamación, el balance de energía y peso corporal. Por otra parte se encontró que La
hormona insulina tiene efectos en la liberación del glicerol que viene del tejido adiposo y que esta
liberación de glicerol en el tejido adiposo era alta en pacientes con hipertiroidismo, y que al
introducir insulina esta liberación se veía suprimida. En el hipertiroidismo, la lipólisis en tejido
adiposo se aumenta durante estado de ayuno, mientras que en periodo post prandial es
rápidamente suprimida a la normalidad.
Las distintas tasas de producción y niveles plasmáticos de las diversas citosina, producidas
por el tejido adiposo, ejercen acciones diferentes, afectando los niveles de producción de las
hormonas tiroideas e insulina y por consiguiente el metabolismo de tejidos, de la manera
siguiente:
a) La adiponectina aumenta la sensibilidad del músculo y el hígado por la insulina. El
aumento de los niveles séricos de adiponectina se ha visto relacionado con el grado de
hipertiroidismo y del proceso autoinmune, por lo tanto se ha demostrado que al elevar los
niveles de adiponectina circulante, los pacientes tuvieron hipertiroidismo autoinmune.
b) La leptina desempeña un papel en el aumento de los niveles de T3, lo que empeora el
hipertiroidismo Encontrándose en el hipertiroidismo, los niveles de leptina circulante,
normales o reducidos
c) La Interleukina-6 Se ha reportado que la IL-6 reduce la síntesis de glucógeno hepático
insulino-dependiente y el consumo de glucosa en los adipositos.
El aumento de los niveles de Interleukina-6 ( IL-6) venoso en el abdomen, se asocia
positivamente a el desarrollo de la insulino-resistencia y
la producción de IL-6
proveniente de tejido adiposo en pacientes con hipertiroidismo no autoinmune.
d) Factor de necrosis tumoral (TNF) Niveles de TNF arterial se observan aumentados y
asociados con los ácidos grasos no esterificados en el plasma arterial, en pacientes con
hipertiroidismo de origen no autoinmune vinculando este aumento con el desarrollo de
una insulino-resistencia en lipólisis.
e) Resistina desempeña un papel crucial en la termogénesis y la homeostasis de la energía en
el
estado de
hipertiroidismo
ya
que
Las
mediciones
de la
resistina en el
hipertiroidismo han mostrado resultados contradictorios; esos niveles se han encontrado
normales, aumentados o disminuidos.
f)
Visfatina
cuya acción es contradictoria
ya que estudios han mostrado una alta
concentración de visfatina plasmática en pacientes con hipertiroidismo y una baja después
del tratamiento; y otros estudio en pacientes con hipertiroidismo, encontraron bajos
niveles de vifastina los cuales aumentados después del la terapia antitiroidea. Aunque si
se ha demostrado que niveles en plasma están correlacionados con la diabetes tipo 2 y
obesidad.
VIII. Secreción de insulina
En el hipertiroidismo, una elevada secreción de insulina puede ser enmascarada por una
elevada degradación de insulina y es por ello que la mayoría de los estudios han reportado
normales o incluso elevados niveles de insulina en la sangre periférica de pacientes con
hipertiroidismo y con normal incide glicérico.
En sujetos delgados euglucémicos con hipertiroidismo se manifiesta
la aumentada
secreción de insulina en lugar de la disminuida, la cual, sin embargo no es suficiente para suprimir
la producción de glucosa hepática; esto también ha sido reportado en individuos con sobrepeso,
euglicemicos y con hipertiroidismo.
IX. Observaciones finales
Los efectos de la insulina han sido estudiados en pacientes con hipertiroidismo y se ha
determinado que las hormonas tiroideas, tienen notables efectos sobre el metabolismo del tejido
adiposo, muscular y hepático; además por ser las funciones metabólicas de la insulina, un reflejo
de su papel en homeostasis de la glucosa y lípidos, en los mismos, se puede decir que un aumento
de las hormonas tiroideas (hipertiroidismo) puede modificar el metabolismo en estos tejidos.
En el músculo esquelético el hipertiroidismo conduce a una mayor demanda de glucosa
encontrándose los depósitos de glucosa neta provocados por la insulina, normales o aumentados
en
músculo
esquelético.
El
hipertiroidismo,
puede
ser de importancia primaria para
aumentar la tasa de formación de lactato por el músculo relativo a la oxidación de la glucosa en el
período postprandial para aumentar la actividad del ciclo de Cori. Esto se conseguirá
principalmente por una disminución en la síntesis de glucógeno y un aumento de la glucogenolisis
en el músculo.
Se observa del metabolismo de la glucosa normal o incluso aumentada en general a
nivel del músculo esquelético con resistencia a la insulina,
debido a que los tejidos
periféricos pueden aumentar la sensibilidad de la utilización de glucosa por IGF-I y al aumento del
flujo sanguíneo en el músculo y tejido adiposo en el hipertiroidismo,
Y por último a nivel hepático Se han encontrado tasas de producción de glucosa hepática,
debido a aumentada gluconeogénesis (en estado de ayuno) por los elevados niveles de glucosa en
plasma encontrados en esta condición, y un aumento de la actividad del ciclo de Cori (en el
estado postprandial y en ayunas).
La resistencia hepática a la insulina, en el hipertiroidismo,
puede resultar favorable en la prevención del desarrollo de hipoglicemia ya que El hipertiroidismo
conduce a una mayor demanda de glucosa.
En el tejido adiposo en estado de ayuno, debido a la resistencia a la insulina, hay un
aumento en la salida de los ácidos grasos no esterificados de éste, dentro de los capilares
necesario para estimular la gluconeogénesis y proporcionar los ácidos grasos no esterificados para
la
oxidación de
otros
tejidos (como
el
muscular)
que,
sin
embargo, disminuye rápidamente después de la comida para facilitar la eliminación de la
glucosa por el músculo resistentes a la insulina (disminuye rápidamente después de la comida para
facilitar la eliminación de la glucosa por el músculo resistentes a la insulina)
Por tal motivo, los pacientes con hipertiroidismo deben ser evaluados por si existen
anormalidades con respeto a la glucosa y a los lípidos y así, al corregir hipertiroidismo puede
mejorar la regulación de la glucosa y del mismo modo, todos los pacientes diabéticos deben ser
evaluados por si existe disfunción tiroidea.
Referencias
1. Dimitriadis G, Raptis SA 2001 Thyroid hormone excess
and glucose intolerance. Exp Clin Endocrinol Diabetes
109(Suppl 2):S225–S239
2. Potenza M, Via MA, Yanagisawa RT 2009 Excess thyroid
hormone and carbohydrate metabolism. Endocr Pract 15:
254–262
3. Kim SR, Tull ES, Talbott EO, Vogt MT, Kuller LH 2002
A hypothesis of synergism: the interrelatioship of T3 and
insulin to disturbances in metabolic homeostasis. Med Hypotheses
59:660–666
4. Althausen T, StockholmM1938 Influence of thyroid gland
on absorption in digestive tract.AmJ Physiol 123:577–588
5. Holdsworth C, Besser G 1968 Influence of gastric emptying
rate and of insulin response on oral glucose tolerance in
thyroid disease. Lancet 2:700–702
6. Ikeda T, Fujiyama K, Hoshino T, Takeuchi T, Tominaga
M, Mashiba H 1989 Glucose tolerance and gastric emptying
in thyrotoxic rats. Metabolism 38:874–877
7. Pfaffenbach B, Adamek RJ, Hagelmann D, Schaffstein J,
WegenerM1997 Effect of hyperthyroidism on antral myoelectrical
activity, gastric emptying and dyspepsia in man.
Hepatogastroenterology 44:1500–1508
8. Barczyn˜ ski M, Thor P 2001 Reversible autonomic dysfunction
in hyperthyroid patients affects gastric myoelectrical
activity and emptying. Clin Auton Res 11:243–249
9. Wegener M, Wedmann B, Langhoff T, Schaffstein J,
AdamekR1992 Effect of hyperthyroidism on the transit of
a caloric solid-liquid meal through the stomach, the small
intestine, and the colon in man. J Clin Endocrinol Metab
75:745–749
10. Jonderko K, Jonderko G, Marcisz C, GołabT1997 Gastric
emptying in hyperthyroidism.AmJ Gastroenterol 92:835–
838
11. Kisakol G, Kayacetin E, Sari O, Kaya A 2003 Gastric emptying
in subclinical hyperthyroidism. Neuro Endocrinol
Lett 24:255–258
12. Dimitriadis G, Baker B, Marsh H, Mandarino L, Rizza R,
Bergman R, Haymond M, Gerich J 1985 Effect of thyroid
hormone excess on action, secretion, and metabolism of
insulin in humans. Am J Physiol 248:E593–E601
13. Mu¨ ller MJ, Seitz HJ 1980 Rapid and direct stimulation of hepatic gluconeogenesis by Ltriiodothyronine in the isolated
perfused rat liver. Life Sci 27:827–835
14. McCulloch AJ, Nosadini R, Pernet A, Piniewska M, Cook
DB, Clark F, Johnston DG, AlbertiKG1983 Glucose turnover
and indices of recycling in thyrotoxicosis and primary
thyroid failure. Clin Sci 64:41–47
15. Bratusch-Marrain PR, Gasiæ S, Waldha¨ usl WK 1984 Triiodothyronine
increases splachnic release and peripheral
uptake of glucose in healthy human. Am J Physiol 247:
E681–E687
16. Wennlund A, Felig P, Hagenfeldt L, Wahren J 1986 Hepatic
glucose production and splachnic glucose exchange
in hyperthyroidism. J Clin Endocrinol Metab 62:174–180
17. Holness MJ, Sugden MC 1987 Continued glucose output
after re-feeding contributes to glucose intolerance in hyperthyroidism.
Biochem J 247:801–804
18. Sestoft L, Bartels PD, Fleron P, Folke M, Gammeltoft S,
KristensenLO1977 Influence of thyroid state on the effects
of glycerol on gluconeogenesis and energy metabolism in
perfused rat liver. Biochem Biophys Acta 499:119–130
19. Okajima F, Ui M 1979 Metabolism of glucose in hyperand
hypothyroid rats in vivo: glucose turnover values and
futile cycle activities obtained with 14C and 3H labeled
glucose. Biochem J 182:565–575
20. Okajima F, Ui M 1979 Metabolism of glucose in hyperand
hypothyroid rats in vivo: minor role of endogenous
insulin in thyroid-dependent changes in glucose turnover.
Biochem J 182:577–584
21. Okajima F, Ui M 1979 Metabolism of glucose in hyperand
hypothyroid rats in vivo: relation of catecholamine
actions to thyroid activity in controlling glucose turnover.
Biochem J 182:585–592
22. Saunders J, Hall SE, So¨ nksen PH 1980 Glucose and free
fatty acid turnover in thyrotoxicosis and hypothyroidism,
before and after treatment. Clin Endocrinol (Oxf)
13:33–44
23. Huang MT, Lardy HA 1981 Effect of thyroid states on the
Cori cycle, glucose-alanine cycle and futile cycling of glucose
metabolism in rats. Arch Biochem Biophys 209:41–51
24. Mu¨ ller MJ, Paschen U, Seitz HJ 1983 Thyroid hormone
regulation of glucose homeostasis in the miniature pig. Endocrinology
112:2025–2031
25. Sandler MP, Robinson RP, Rabin D, Lacy WW, Abumrad
NN1983 The effect of thyroid hormones on gluconeogenesis
and forearm metabolism in man. J Clin Endocrinol
Metab 56:479–485
26. Dimitriadis G, Newsholme EA 2004 Integration of some
biochemical and physiologic effects of insulin that may
play a role in the control of blood glucose concentration. In:
LeRoith D, Taylor S, Olefsky J, eds. Diabetes mellitus, a
fundamental and clinical text. 3rd ed. Philadelphia, Baltimore,
NewYork, London, Buenos Aires, Hong Kong, Sydney,
Tokyo: Lippincott, Williams and Wilkins; 183–197
27. Kabadi U, Eisenstein A 1980 Impaired pancreatic a-cell
response in hyperthyroidism. J Clin Endocrinol Metab
51:478–482
28. Kabadi U, Eisenstein A 1980 Glucose intolerance in hyperthyroidism:
role of glucagon. J Clin Endocrinol Metab
50:392–396
29. PerezG, Ungano B, Covelli A, Morrone G, Lombardi G,
Scopacasa F, Rossi R 1980 Altered glucoregulatory response
to physiological infusions of epinephrine and glucagon
in hyperthyroidism. J Clin Endocrinol Metab
51:972–977
30. Madsen SN, Sonne O1976 Increase of glucagon receptors
in hyperthyroidism. Nature 262:793–795
31. Riis AL, Jørgensen JO, Ivarsen P, Frystyk J, Weeke J,
Møller N 2008 Increased protein turnover and proteolysis
is an early and primary feature of short-term experimental
hyperthyroidism in healthy women. J Clin Endocrinol
Metab 93:3999 –4005
32. Weinstein SP, O’Boyle E, Fisher M, Haber RS 1994 Regulation
of GLUT 2 glucose transporter expression in
liver by thyroid hormone: evidence for hormonal regulation
of hepatic glucose transport system. Endocrinology
135:649 –654
33. Mokuno T, Uchimura K, Hayashi R, Hayakawa N,
Makino M, Nagata M, Kakizawa H, Sawai Y, Kotake M,
Oda N, Nakai A, Nagasaka A, ItohM1999 Glucose transporter
concentrations in hyper- and hypothyroid rat livers.
J Endocrinol 160:285–289
34. Dimitriadis G, Mitrou P, Lambadiari V, Boutati E, Maratou
E, Koukkou E, Tzanela M, Thalassinos N, Raptis SA 2006
Glucose and lipid fluxes in the adipose tissue after meal
ingestion in hyperthyroidism. J Clin Endocrinol Metab
91:1112–1118
35. Iossa S, Lionetti L, Mollica MP, Crescenzo R, Barletta A,
Liverini G 2001 Fat balance and serum leptin concentrations
in normal, hypothyroid, and hyperthyroid rats. Int J
Obes Relat Metab Disord 25:417–425
36. Lam TK, Carpentier A, Lewis GF, van de Werve G, Fantus
IG, Giacca A 2003 Mechanisms of the free fatty acid-induced
increase in hepatic glucose production.AmJ Physiol
Endocrinol Metab 284:E863–E873
37. Klieverik LP, Janssen SF, van Riel A, Foppen E, Bisschop
PH, Serlie MJ, Boelen A, Ackermans MT, Sauerwein HP,
Fliers E, Kalsbeek A 2009 Thyroid hormone modulates
glucose production via a sympathetic pathway from the
hypothalamic paraventicular nucleus to the liver. Proc Natl
Acad Sci USA 106:5966–5971
38. Dimitriadis G, Parry-Billings M, Bevan S, Leighton B,
Krause U, Piva T, Tegos K, Challiss RA, Wegener G,
Newsholme EA 1997 The effects of insulin on transport and
metabolism of glucose in skeletal muscle from hyperthyroid
and hypothyroid rats. Eur J Clin Invest 27:475–483
39. Newsholme EA, Crabtree B 1976 Substrate cycles in metabolic
regulation and heat generation. Biochem Soc Symp
41:61–109
40. Foss MC, Paccola GM, Saad MJ, Pimenta WP, Piccinato
CE, IazigiN1990 Peripheral glucose metabolism in human
hyperthyroidism. J Clin Endocrinol Metab 70:1167–1172
41. Laville M, Riou JP, Bougneres PF, Canivet B, Beylot M,
Cohen R, Serusclat P, Dumontet C, Berthezene F, Mornex
R1984 Glucose metabolism in experimental hyperthyroidism:
intact in vivo sensitivity to insulin with abnormal binding
and increased glucose turnover. J Clin Endocrinol
Metab 58:960–965
42. Randin JP, Scazziga B, Je´quier E, Felber JP 1985 Studies of
glucose and lipid metabolism and continuous indirect calorimetry
in Graves’ disease: effect of an oral glucose load.
J Clin Endocrinol Metab 61:1165–1171
43. Cavallo-Perin P, Bruno A, Boine L, Cassader M, Lenti G,
Pagano G 1988 Insulin resistance in Graves’ disease: a q
uantitative in vivo evaluation. Eur J Clin Invest 18:
607–613
44. Dimitriadis G, Mitrou P, Lambadiari V, Boutati E, Maratou
E, Koukkou E, Panagiotakos D, Tountas N, Economopoulos
T, Raptis SA 2008 Insulin-stimulated rates of glucose uptake
in muscle in hyperthyroidism: the importance of blood flow.
J Clin Endocrinol Metab 93:2413–2415
45. DimitriadisGD,Leighton B, Vlachonikolis IG, Parry-Billings
M, Challiss RA, West D, Newsholme EA 1988 Effects of
hyperthyroidism on the sensitivity of glycolysis and glycogen
synthesis to insulin in the soleus muscle of the rat. Biochem J
253:87–92
46. Ho WJ, Chen ST, Tsay PK, Wang CL, Hsu TS, Kuo CT,
Chen WJ 2007 Enhancement of endothelium-dependent
flow-mediated vasodilation in hyperthyroidism. Clin Endocrinol
(Oxf) 67:505–511
47. Randin JP, Tappy L, Scazziga B, Jequier E, Felber JP 1986
Insulin sensitivity and exogenous insulin clearance in
Graves’ disease. Measurements by the glucose clamp technique
and continuous indirect calorimetry. Diabetes 35:
178–181
48. Casla A, Rovira A, Wells JA, Dohm GL 1990 Increased
glucose transporter (GLUT4) protein expression in hyperthyroidism.
Biochem Biophys Res Commun 171:182–188
49. Shepherd PR, Kahn BB 1999 Glucose transporters and
insulin action—implications for insulin resistance and diabetes
mellitus. N Engl J Med 341:248–257
50. Castello´ A, Rodríguez-Manzaneque JC, Camps M, Pe´rezCastillo A, Testar X, PalacínM,Santos A, ZorzanoA1994
Perinatal hypothyroidism impairs the normal transition of
GLUT 4 and GLUT 1 glucose transporters from fetal to
neonatal levels in heart and brown adipose tissue. J Biol
Chem 269:5905–5912
51. Weinstein SP, O’Boyle E, Haber RS 1994 Thyroid hormone
increases basal and insulin-stimulated glucose transport
in skeletal muscle: the role of GLUT4 glucose transporter
expression. Diabetes 43:1185–1189
52. Haber RS, WilsonCM,Weinstein SP, Pritsker A, Cushman
SW 1995 Thyroid hormone increases the partitioning of
glucose transporters to the plasma membrane in ARL 15
cells. Am J Physiol 269:E605–E610
53. Weinstein SP, Watts J, Haber RS 1991 Thyroid hormone
increases muscle/fat glucose transporter gene expression in
rat skeletal muscle. Endocrinology 129:455–464
54. Heather LC, Cole MA, Atherton HJ, Coumans WA, Evans
RD, Tyler DJ, Glatz JF, Luiken JJ, Clarke K 2010 Adenosine
monophosphate-activated protein kinase activation,
substrate transporter translocation, and metabolism
in the contracting hyperthyroid rat heart. Endocrinology
151:422–431
55. Dimitriadis G, Maratou E, Alevizaki M, Boutati E, Psara
K, Papasteriades C, Raptis SA 2005 Thyroid hormone excess
increases basal and insulin-stimulated recruitment of
GLUT3 glucose transporters on cell surface. Horm Metab
Res 37:15–20
56. Khayat ZA, McCall AL, KlipA1998 Unique mechanism of
GLUT3 glucose transporter regulation by prolonged energy
demand. Biochem J 333:713–718
57. Mandarino LJ, Printz RL, Cusi KA, Kinchington P,
O’Doherty RM, Osawa H, Sewell C, Consoli A, Granner
DK, DeFronzo RA 1995 Regulation of hexokinase II and
glycogen synthase mRNA protein, and activity in human
muscle. Am J Physiol 269:E701–E708
58. Sugden MC, Liu YL, Holness MJ 1990 Glucose utilization
by skeletal muscles in-vivo in experimental hyperthyroidism
in the rat. Biochem J 271:421–425
59. Møller N, Nielsen S, Nyholm B, Pørksen N, Alberti KG,
Weeke J 1996 Glucose turnover, fuel oxidation and forearm
substrate exchange in patients with thyrotoxicosis before
and after medical treatment. Clin Endocrinol (Oxf)
44:453–459
60. Dimitriadis GD, Richards SJ, Parry-Billings M, Leighton
B, Newsholme EA, Challiss RA 1991 _-Adrenoreceptoragonist
and insulin actions on glucose metabolism in rat
skeletal muscle in different thyroid states. Biochem J 278:
587–593
61. Bachman ES, Hampton TG, Dhillon H, Amende I, Wang J,
Morgan JP, HollenbergAN2004 The metabolic and cardiovascular
effects of hyperthyroidism are independent of
_-adrenergic stimulation. Endocrinology 145:2767–2774
62. Ladenson PW, Sherman SI, Baughman KL, Ray PE, Feldman
AM 1992 Reversible alterations in myocardial gene expression
in a young man with dilated cardiomyopathy and hypothyroidism.
Proc Natl Acad Sci USA 89:5251–5255
63. Tse J, Wrenn RW, Kuo JF 1980 Thyroxine-induced changes
in characteristics and activities of _-adrenergic receptors and
adenosine 3_,5_-monophosphate and guanosine 3_,5_monophosphate systems in the heart may be related to reputed
catecholamine supersensitivity in hyperthyroidism.
Endocrinology 107:6–16
64. Carvalho-Bianco SD, Kim BW, Zhang JX, Harney JW,
Ribeiro RS, Gereben B, Bianco AC, Mende U, Larsen PR
2004 Chronic cardiac-specific thyrotoxicosis increases
myocardial _-adrenergic responsiveness. Mol Endocrinol
18:1840–1849
65. Sugden MC, Lall HS, Harris RA, Holness MJ 2000 Selective
modification of the pyruvate dehydrogenase kinase
isoform profile in skeletal muscle in hyperthyroidism: implications
for the regulatory impact of glucose on fatty acid
oxidation. J Endocrinol 167:339–345
66. Short KR, Nygren J, Barazzoni R, Levine J, Nair KS 2001
T3 increases mitochondrial ATP production in oxidative
muscle despite increased expression of UCP2 and -3. Am J
Physiol Endocrinol Metab 280:E761–E769
67. Short KR, Nygren J, Nair KS 2007 Effect of T3-induced
hyperthyroidism on mitochondrial and cytoplasmic protein
synthesis rates in oxidative and glycolytic tissues in
rats. Am J Physiol Endocrinol Metab 292:E642–E647
68. Valcavi R, Zini M, Portioli I 1992 Thyroid hormone and
growth hormone secretion. J Endocrinol Invest 15:313–330
69. Miell JP, Taylor AM, Zini M, Maheshwari HG, Ross RJ,
Valcavi R 1993 Effects of hypo- and hyperthyroidism on
IGFs, growth hormone and IGF-binding proteins. J Clin
Endocrinol Metab 76:950–955
70. Tosi F, Moghetti P, Castello R, Negri C, Bonora E,Muggeo
M 1996 Early changes in plasma glucagon and growth
hormone response to oral glucose in experimental hyperthyroidism.
Metabolism 45:1029–1033
71. RizzaRA,Mandarino LJ, Gerich JE 1982 Cortisol-induced
insulin resistance in man: impaired suppression of glucose
production and stimulation of glucose utilization due to a
post-receptor defect of insulin action. J Clin Endocrinol
Metab 54:131–138
72. Rizza RA, Mandarino LJ, Gerich JE 1982 Effects of
growth hormone on insulin action: mechanisms of insulin
resistance, impaired suppression of glucose production
and impaired stimulation of glucose utilization.
Diabetes 31:663–669
73. Ng SF, Storlien LH, Kraegen EW, Stuart MC, Chapman
GE, Lazarus L 1990 Effect of biosynthetic human growth
hormone on insulin action in individual tissues of the rat
in-vivo. Metabolism 39:264–268
74. Dimitriadis G, Parry-Billings M, Leighton B, Piva T,
Dunger D, Calder P, Bond J, NewsholmeE1994 Studies on
the effects of growth hormone administration in vivo on
the rates of glucose transport and utilization in rat skeletal
muscle. Eur J Clin Invest 24:161–165
75. Haber RS, Weinstein SP 1992 Role of glucose transporters
in glucocorticoid-induced insulin resistance. Diabetes 41:
728–735
76. Dimitriadis G, Leighton B, Parry-Billings M, Sasson S,
Young M, Krause U, Bevan S, Piva T, Wegener G,
Newsholme EA 1997 Effects of glucocorticoid excess on the
sensitivity of glucose transport and metabolism to insulin in
rat skeletal muscle. Biochem J 321:707–712
77. Taylor R, McCulloch AJ, Zeuzem S, Gray P, Clark F,
Alberti KG 1985 Insulin secretion, adipocyte insulin binding
and insulin sensitivity in thyrotoxicosis. Acta Endocrinol
109:96–103
78. Hagen JH 1960 Effect of insulin on the metabolism of
adipose tissue from hyperthyroid rats. J Biol Chem 235:
2600–2603
79. Matthaei S, Trost B, Hamann A, Kausch C, Benecke H,
Greten H, Ho¨ ppner W, Klein HH 1995 Effects of in vivo
thyroid hormone status on insulin signaling and GLUT1
and GLUT4 glucose transport systems in rat adipocytes.
J Endocrinol 144:347–357
80. Czech MP, Malbon CC, Kerman K, Gitomer W, Pilch PF
1980 Effect of thyroid status on insulin action in rat adipocytes
and skeletal muscle. J Clin Invest 66:574–582
81. Cech JM, Amatruda JM 1983 The effect of triiodothyronine
on insulin binding and action in rat adipocytes. Horm
Metab Res 15:530–532
82. Arner P, Bolinder J, Wennlund A, Ostman J 1984 Influence
of thyroid hormone level on insulin action in human adipose
tissue. Diabetes 33:369–375
83. Pedersen O, Richelsen B, Bak J, Arnfred J, Weeke J,
Schmitz O 1988 Characterization of the insulin resistance
of glucose utilization in adipocytes from patients with hyperand hypothyroidism. Acta Endocrinol 119:228–234
84. Voldstedlund M, Tranum-Jensen J, Handberg A, Vinten J
1995 Quantity of Na/K-ATPase and glucose transporters
in the plasma membrane of rat adipocytes is reduced by in
vivo triiodothyronine. Eur J Endocrinol 133:626–634
85. Goto H, Sumida Y, Nakatani K, Yano Y, Shima T 1997
Effect of triiodothyronine on glucose transport in rat adipocytes.
Life Sci 61:193–204
86. Fryer LG, Holness MJ, Sugden MC 1997 Selective modification
of insulin action in adipose tissue by hyperthyroidism.
J Endocrinol 154:513–522
87. Rich C, Bierman EL, Schwartz IL 1959 Plasma non-esterified
fatty acids in hyperthyroid states. J Clin Invest 38:
275–278
88. Pucci E, Chiovato L, Pinchera A 2000 Thyroid and lipid
metabolism. Int J Obes Relat Metab Disord 24(Suppl 2):
109–112
89. Coppack SW, Jensen MD, Miles JM 1994 The in vivo regulation
of lipolysis in humans. J Lipid Res 35:177–193
90. Frayn KN 2002 Adipose tissue as a buffer for daily lipid
flux. Diabetologia 45:1201–1210
91. Zimmermann R, Strauss JG, Haemmerle G, Schoiswohl G,
Birner-Gruenberger R, Riederer M, Lass A, Neuberger G,
Eisenhaber F, Hermetter A, Zechner R 2004 Fat mobilization
in adipose tissue is promoted by adipose triglyceride
lipase. Science 306:1383–1386
92. Jocken JW, Langin D, Smit E, Saris WH, Valle C, Hul GB,
Holm C, Arner P, Blaak EE 2007 Adipose triglyceride
(ATGL) and hormone-sensitive lipase (HSL) protein expression
is decreased in the obese insulin resistant state.
J Clin Endocrinol Metab 92:2292–2299
93. Abrams JJ, Grundy SM, Ginsberg H 1981 Metabolism of
plasma triglycerides in hypothyroidism and hyperthyroidism.
J Lipid Res 22:307–322
94. Lam KS, ChanMK, YeungRT1986 High-density lipoprotein
cholesterol, hepatic lipase and lipoprotein lipase activities
in thyroid dysfunction: effects of treatment. Q
J Med 59:513–521
95. Nikkila¨ EA, KekkiM1972 Plasma triglyceride metabolism
in thyroid disease. J Clin Invest 51:2103–2114
96. Tulloch B, Lewis B, Fraser TR 1973 Triglyceride metabolism
in thyroid disease. Lancet 1:391–394
97. Frayn KN, Shadid S, Hamlani R, Humphreys SM, Clark
ML, Fielding BA, Boland O, Coppack SW 1994 Regulation
of fatty acid movement in human adipose tissue in the
postabsorptive-to-postprandial transition. Am J Physiol
266:E308–E317
98. Tan GD, Fielding BA, Currie JM, Humphreys SM, De´sage
M,FraynKN,LavilleM,Vidal H, Karpe F 2005 The effects
of rosiglitazone on fatty acid and triglyceride metabolism
in type 2 diabetes. Diabetologia 48:83–95
99. Lewis GF, Carpentier A, Adeli K, Giacca A 2002 Disordered
fat storage and mobilization in the pathogenesis
of insulin resistance and type 2 diabetes. Endocr Rev
23:201–229
100. Heimberg M, Olubadewo JO, Wilcox HG 1985 Plasma
lipoproteins and regulation of hepatic metabolism of fatty
acids in altered thyroid states. Endocr Rev 6:590–607
101. Miles JM, Wooldridge D, Grellner WJ, Windsor S, Isley
WL, Klein S, Harris WS 2003 Nocturnal and postprandial
free fatty acid kinetics in normal and type 2 diabetic patients.
Diabetes 52:675–681
102. Jensen MD, Caruso M, Heiling V, Miles JM 1989 Insulin
regulation of lipolysis in non-diabetic and IDDM subjects.
Diabetes 38:1595–1601
103. Stumvoll M, Jacob S, Wahl HG, Hauer B, Lo¨ blein K,
Grauer P, Becker R, Nielsen M, Renn W, Ha¨ ring H 2000
Suppression of systemic, intramuscular and subcutaneous
adipose tissue lipolysis by insulin in humans. J Clin Endocrinol
Metab 85:3740–3745
104. Riis AL, Gravholt CH, Djurhuus CB, Nørrelund H,
Jørgensen JO, Weeke J, Møller N 2002 Elevated regional
lipolysis in hyperthyroidism. J Clin Endocrinol Metab 87:
4747–4753
105. Haluzik M, Nedvidkova J, Bartak V, Dostalova I, Vlcek P,
Racek P, Taus M, Svacina S, Alesci S, PacakK2003 Effects
of hypo- and hyperthyroidism on noradrenergic activity
and glycerol concentrations in human subcutaneous abdominal
adipose tissue assessed with microdialysis. J Clin
Endocrinol Metab 88:5605–5608
106. Nedvidkova J, Haluzik M, Bartak V, Dostalova I, Vlcek P,
Racek P, Taus M, Behanova M, Svacina S, Alesci S, Pacak
K 2004 Changes of noradrenergic activity and lipolysis in
the subcutaneous abdominal adipose tissue of hypo- and
hyperthyroid patients: an in vivo microdialysis study. Ann
NY Acad Sci 1018:541–549
107. Cachefo A, Boucher P, Vidon C, Dusserre E, Diraison F,
Beylot M 2001 Hepatic lipogenesis and cholesterol synthesis
in hyperthyroid patients. J Clin Endocrinol Metab
86:5353–5357
108. Beylot M, Martin C, Laville M, Riou JP, Cohen R, Mornex
R 1991 Lipolytic and ketogenic fluxes in human hyperthyroidism.
J Clin Endocrinol Metab 73:42–49
109. Hagenfeldt L, Wennlung A, Felig P, Wahren J 1981 Turnover
and splanchnic metabolism of free fatty acids in hyperthyroidism
patients. J Clin Invest 67:1672–1677
110. Gebhard RL, Stone BG, Andreini JP, Duane WC, Evans
CD, Prigge W 1992 Thyroid hormone differentially augments
biliary sterol secretion in the rat. I. The isolated
perfused liver model. J Lipid Res 33:1459–1466
111. Sestoft L 1980 Metabolic aspects of the calorigenic effect
of thyroid hormone in mammals. Clin Endocrinol (Oxf)
13:489–506
112. Dimitriadis G, Boutati E, Raptis SA 2007 The importance
of adipose tissue in diabetes pathophysiology and treatment.
Horm Metab Res 39:705–706
113. Rabe K, Lehrke M, Parhofer KG, Broedl UC 2008 Adipokines
and insulin resistance. Mol Med 14:741–751
114. Hardardo´ ttir I, Gru¨ nfeld C, Feingold KR 1994 Effects of
endotoxin and cytokines on lipid metabolism. Curr Opin
Lipidol 5:207–215
115. Iglesias P, Alvarez Fidalgo P, Codoceo R, Díez JJ 2003
Serum concentrations of adipocytokines in patients with
hyperthyroidism and hypothyroidism before and after
control of thyroid function. Clin Endocrinol (Oxf) 59:
621–629
116. Santini F, Marsili A, Mammoli C, Valeriano R, Scartabelli
G, Pelosini C, Giannetti M, Centoni R, Vitti P, Pinchera A
2004 Serum concentrations of adiponectin and leptin in
patients with thyroid dysfunctions. J Endocrinol Invest 27:
RC5–RC7
117. Altinova AE, To¨ ru¨ ner FB, Aktu¨ rkM, Bukan N, Cakir N,
Ayvaz G, Arslan M 2006 Adiponectin levels and cardiovascular
risk factors in hypothyroidism and hyperthyroidism.
Clin Endocrinol (Oxf) 65:530–535
118. Yaturu S, Prado S, Grimes SR 2004 Changes in adipocytes
hormones leptin, resistin and adiponectin in thyroid dysfunction.
J Cell Biochem 93:491–496
119. Saito T, Kawano T, Saito T, Ikoma A, Namai K,
Tamemoto H, Kawakami M, Ishikawa SE 2005 Elevation
of serum adiponectin levels in Basedow disease. Metabolism
54:1461–1466
120. Yu H, Yang Y, Zhang M, Lu H, Zhang J, Wang H,
Cianflone K 2006 Thyroid status influence on adiponectin,
acylation stimulating protein (ASP) and complement
C3 in hyperthyroid and hypothyroid subjects. Nutr
Metab (Lond) 3:13
121. Sieminska L, Niedziolka D, Pillich A, Kos-Kudla B, Marek
B, Nowak M, Borgiel-Marek H 2008 Serum concentrations
of adiponectin and resistin in hyperthyroid Graves’
disease patients. J Endocrinol Invest 31:745–749
122. Iglesias P, Díez JJ 2007 Influence of thyroid dysfunction
on serum concentrations of adipocytokines. Cytokine
40:61–70
123. Wahrenberg H, Wennlund A, Hoffstedt J 2002 Increased
adipose tissue secretion of interleukin-6, but not
of leptin, plasminogen activator inhibitor-1 or tumor
necrosis factor _, in Graves’ hyperthyroidism. Eur J Endocrinol
146:607–611
124. Ozata M, Uckaya G, Bolu E, Corapcioglu D, Bingol N,
Ozdemir IC 2001 Plasma leptin concentrations in patients
with Graves’ disease with or without ophthalmopathy.
Med Sci Monit 7:696–700
125. SevenR2001Thyroid status and leptin in Basedow-Graves
and multinodular goiter patients. J Toxicol Environ Health
A 63:575–581
126. Pinkney JH, Goodrick SJ, Katz J, Johnson AB, Lightman
SL, Coppack SW, Mohamed-Ali V 1998 Leptin and the
pituitary-thyroid axis: a comparative study in lean, obese,
hypothyroid and hyperthyroid subjects. Clin Endocrinol
(Oxf) 49:583–588
127. Cabanelas A, Lisboa PC, Moura EG, Pazos-Moura CC
2006 Leptin acute modulation of the 5_-deiodinase activities
in hypothalamus, pituitary and brown adipose tissue
of fed rats. Horm Metab Res 38:481–485
128. Lisboa PC, Oliveira KJ, Cabanelas A, Ortiga-Carvalho
TM, Pazos-Moura CC 2003 Acute cold exposure, leptin,
and somatostatin analog (octerotide) modulate thyroid 5_deiodinase activity. Am J Physiol Endocrinol Metab 284:
E1172–E1176
129. Klover PJ, Zimmers TA, Koniaris LG, Mooney RA 2003
Chronic exposure to interleukin-6 causes hepatic insulin
resistance in mice. Diabetes 52:2784–2789
130. Senn JJ, Klover PJ, Nowak IA, Mooney RA 2002 Interleukin6 induces cellular insulin resistance in hepatocytes.
Diabetes 51:3391–3399
131. Rotter V, Nagaev I, Smith U 2003 Interleukin-6 (IL-6)
induces insulin resistance in 3T3-L1 adipocytes and is, like
IL-8 and tumor necrosis factor-_, overexpressed in human
fat cells from insulin-resistant subjects. J Biol Chem 278:
45777–45784
132. Carey AL, Steinberg GR, Macaulay SL, Thomas WG,
Holmes AG, Ramm G, Prelovsek O, Hohnen-Behrens C,
Watt MJ, James DE,KempBE, Pedersen BK, FebbraioMA
2006 Interleukin-6 increases insulin-stimulated glucose
disposal in humans and glucose uptake and fatty acid oxidation
in vitro via AMP-activated protein kinase. Diabetes
55:2688–2697
133. Al-Khalili L, Bouzakri K, Glund S, Lo¨ nnqvist F, Koistinen
HA, Krook A 2006 Signaling specificity of interleukin-6
action on glucose and lipid metabolism in skeletal muscle.
Mol Endocrinol 20:3364–3375
134. Salvi M, Pedrazzoni M, Girasole G, Giuliani N, Minelli R,
Wall JR, Roti E 2000 Serum concentrations of proinflammatory
cytokines in Graves’ disease: effect of treatment,
thyroid function, ophthalmopathy and cigarette smoking.
Eur J Endocrinol 143:197–202
135. Al-Humaidi MA 2000 Serum cytokine levels in Graves’
disease. Saudi Med J 21:639–644
136. Mitrou P, Boutati E, Lambadiari V, Tsegka A, Raptis AE,
Tountas N, Economopoulos T, Raptis SA, Dimitriadis G
2010 Insulin resistance in hyperthyroidism: the role of IL6
and TNF_. Eur J Endocrinol 162:121–126
137. Pontikides N, Krassas GE 2007 Basic endocrine products
of adipose tissue in states of thyroid dysfunction. Thyroid
17:421–431
138. Senturk T, Kozaci LD, Kok F, Kadikoylu G, Bolaman Z
2003 Proinflammatory cytokine levels in hyperthyroidism.
Clin Invest Med 26:58–63
139. Celik I, Akalin S, Erba° T 1995 Serum levels of interleukin
6 and tumor necrosis factor-_ in hyperthyroid patients before
and after propylthiouracil treatment. Eur J Endocrinol
132:668–672
140. Díez JJ, Hernanz A, Medina S, Bayo´n C, Iglesias P 2002
Serum concentrations of tumor necrosis factor-_(__F-_)
and soluble __F-_ receptor p55 in patients with hypothyroidism
and hyperthyroidism before and after normalization
of thyroid function. Clin Endocrinol (Oxf) 57:
515–521
141. Berg M, Fraker DL, AlexanderHR1994 Characterization
of differentiation factor/leukaemia inhibitory factor effect
on lipoprotein lipase activity and mRNA in 3T3-L1 adipocytes.
Cytokine 6:425–432
142. Feingold KR, Grunfeld C 1992 Role of cytokines in inducing
hyperlipidemia. Diabetes 41(Suppl 2):97–101
143. Krassas GE, Pontikides N, Loustis K, Koliakos G,
Constantinidis T, Panidis D 2005 Resistin levels in hyperthyroid
patients before and after restoration of thyroid
function: relationship with body weight and body composition.
Eur J Endocrinol 153:217–221
144. Fukuhara A, Matsuda M, Nishizawa M, Segawa K,
Tanaka M, Kishimoto K, Matsuki Y, Murakami M,
Ichisaka T,MurakamiH, Watanabe E, Takagi T, Akiyoshi
M, Ohtsubo T, Kihara S, Yamashita S, Makishima M,
Funahashi T, Yamanaka S, Hiramatsu R, Matsuzawa Y,
Shimomura I 2005 Visfatin: a protein secreted by visceral
fat that mimics the effects of insulin. Science 307:426–430
145. Tsiotra PC, Tsigos C, Yfanti E, Anastasiou E, Vikentiou
M, Psarra K, Papasteriades C, Raptis SA 2007 Visfatin,
TNF_ and IL6 mRNA expression is increased in mononuclear
cells from type 2 diabetic women. Horm Metab
Res 39:758–763
146. Haider DG, Schindler K, Schaller G, Prager G, Wolzt M,
Ludvik B 2006 Increased plasma visfatin concentrations in
morbidly obese subjects are reduced after gastric banding.
J Clin Endocrinol Metab 91:1578–1581
147. Pagano C, Pilon C, Olivieri M, Mason P, Fabris R, Serra R,
Milan G, Rossato M, Federspil G, Vettor R 2006 Reduced
plasma visfatin/pre-B cell colony-enhancing factor in obesity
is not related to insulin resistance in humans. J Clin
Endocrinol Metab 91:3165–3170
148. Chu CH, Lee JK, Wang MC, Lu CC, Sun CC, Chuang MJ,
Lam HC 2008 Change of visfatin, C-reactive protein concentrations,
and insulin sensitivity in patients with hyperthyroidism.
Metabolism 57:1380–1383
149. Ozkaya M, Sahin M, Cakal E, Yuzbasioglu F, Sezer K,
Kilinc M, Imrek SS 2009 Visfatin plasma concentrations in
patients with hyperthyroidism and hypothyroidism before
and after control of thyroid function. J Endocrinol Invest
32:435–439
150. Hales CN, Hyams DE 1964 Plasma concentrations of glucose
non-esterified fatty acid, and insulin during oral glucose
tolerance tests in thyrotoxicosis. Lancet 2:69–71
151. Andreani D, Menzinger G, Fallucca F, Aliberti G,
Tamburrano G, Cassano C 1970 Insulin levels in thyrotoxicosis
and primary myxoedema: response to intravenous
glucose and glucagon. Diabetologia 6:1–7
152. Renauld A, Pinto JE, Sverdlik RC, Foglia VG 1971 Studies
on the effects of hyperthyroidism on the insulin response to
hyperglycemia in the dog. Horm Metab Res 3:247–251
153. Seino Y, Goto Y, Taminato T, Ikeda M, Imura H 1974
Plasma insulin and glucagon response to arginine in patients
with thyroid dysfunction. J Clin Endocrinol Metab
38:1136–1140
154. Cavagnini F, Peracchi M, Raggi U, Bana R, Pontiroli AE,
Malinverni A, Pinto M 1974 Impairment of growth hormone
and insulin secretion in hyperthyroidism. Eur J Clin
Invest 4:71–77
155. Lenzen S, Joost HG, Hasselblatt A 1976 Thyroid function
and insulin secretion from the perfused pancreas in the rat.
Endocrinology 99:125–129
156. Ahre´n B, Lundquist I, Hedner P, Valdemarsson S, Scherste´n
B 1985 Glucose tolerance and insulin and C-peptide responses
after various insulin secretion stimuli in hyper- and
hypothyroid subjects before and after treatment. Diabetes
Res 2:95–103
157. Roti E, Braverman LE, Robuschi G, Salvi M, Gardini E,
d’Amato L, Maestri D, Montermini M, Borciani E,
Pezzarossa A 1986 Basal and glucose- and arginine-stimulated
serum concentrations of insulin, C-peptide and glucagon
in hyperthyroid patients. Metabolism 35:337–342
158. Roubsanthisuk W, Watanakejorn P, Tunlakit M,
Sriussadaporn S 2006 Hyperthyroidism induces glucose intolerance
by lowering both insulin secretion and peripheral
insulin sensitivity. J Med Assoc Thai 89(Suppl 5):S133–S140
159. Holness MJ, GreenwoodGK,SmithND,SugdenMC2008
PPAR_ activation and increased dietary lipid oppose thyroid
hormone signaling and rescue impaired glucose-stimulated
insulin secretion in hyperthyroidism. Am J Physiol
Endocrinol Metab 295:E1380–E1389
160. Doar JW, Stamp TC, Wynn V, AudhyaTK1969 Effects of
oral and intravenous glucose loading in thyrotoxicosis:
studies of plasma glucose, free fatty acids, plasma insulin
and blood pyruvate levels. Diabetes 18:633–639
161. Marecek RL, Feldman JM 1973 Effect of hyperthyroidism
on insulin and glucose dynamics in rabbits. Endocrinology
92:1604–1611
162. Andersen OO, Friis T, Ottesen B 1977 Glucose tolerance
insulin secretion in hyperthyroidism. Acta Endocrinol 84:
576–587
163. Wajchenberg BL, Cesar FP, Leme CE, Souza IT, Pieroni
RR, Mattar E 1978 Carbohydrate metabolism in thyrotoxicosis:
studies on insulin secretion before and after remission
from the hyperthyroid state. Horm Metab Res 10:
294–299
164. Wahren J, Wennlund A, Nilsson LH, Felig P 1981 Influence
of hyperthyroidism on splachnic exchange of glucose
and gluconeogenesis precursors. J Clin Invest 67:1056–
1063
165. Asano T, Okumura M 1982 Insulin delivery rates in response
to glucose and arginine infusion in hyperthyroidism.
Diabetologia 23:108–113
166. Osei K, Falko JM, O’Dorisio TM, Adam DR 1984 Decreased
serum C-peptide/insulin molar ratios after oral glucose ingestion
in hyperthyroid patients. Diabetes Care 7:471–475
167. Shen DC, Davidson MB 1985 Hyperthyroid Graves’ disease
causes insulin antagonism. J Clin Endocrinol Metab
60:1038–1041
168. Jap TS, Ho LT, Won JG 1989 Insulin secretion and
sensitivity in hyperthyroidism. Horm Metab Res
21:261–266
169. Al-Shoumer KA, Vasanthy BA, Al-ZaidMM2006 Effects
of treatment of hyperthyroidism on glucose homeostasis,
insulin secretion, and markers of bone turnover. Endocr
Pract 12:121–130
170. Ohguni S, Notsu K, Kato Y 1995 Correlation of plasma
free thyroxine levels with insulin sensitivity and metabolic
clearance rate of insulin in patients with hyperthyroid
Graves’ disease. Intern Med 34:339–341
171. Gonzalo MA, Grant C, Moreno I, Garcia FJ, Sua´ rez AI,
Herrera-Pombo JL, Rovira A 1996 Glucose tolerance, insulin
secretion, insulin sensitivity and glucose effectiveness
in normal and overweight hyperthyroid women. Clin Endocrinol
(Oxf) 45:689–697
172. Mitrakou A, Kelley D, Mokan M, Veneman T, Pangburn
T, Reilly J, Gerich J 1992 Role of reduced suppression of
glucose production and diminished early insulin release in
impaired glucose tolerance. N Engl J Med 326:22–29
173. Malaisse WJ, Malaisse-Lagae F, McCraw EF 1967 Effects
of thyroid function upon insulin secretion. Diabetes 16:
643–646
174. Lenzen S 1978 Dose-response studies on the inhibitory
effect of thyroid hormones on insulin secretion in the rat.
Metabolism 27:81–88
175. Fukuchi M, Shimabukuro M, Shimajiri Y, Oshiro Y, Higa
M, Akamine H, Komiya I, Takasu N 2002 Evidence for a
deficient pancreatic _-cell response in a rat model of hyperthyroidism.
Life Sci 71:1059–1070
176. Dimitriadis G, Maratou E, Boutati E, Kollias A, Tsegka K,
Alevizaki M, Peppa M, Raptis SA, Hadjidakis DJ 2008
IGF-1 increases the recruitment of GLUT4 and GLUT3
glucose transporters on cell surface in hyperthyroidism.
Eur J Endocrinol 158:361–366
177. Bech K, Damsbo P, Eldrup E, Beck-Nielsen H, Røder ME,
Hartling SG, Vølund A, Madsbad S 1996 B-Cell function
and glucose and lipid oxidation in Graves’ disease. Clin
Endocrinol (Oxf) 44:59–66